W 2015 roku grupa naukowców z Uniwersytetu Minnesoty umieściła zdrowych ochotników w wysokopolowym skanerze rezonansu magnetycznego i odczytała poziom dinukleotydu nikotynoamidoadeninowego z ich płatów potylicznych bez pobierania próbek. Widmo fosforu-31 rozdziela sygnały NAD+ i NADH, więc pomiar podaje zarówno wielkość obu pul, jak i stan redoks w nienaruszonym mózgu. U badanych ochotników poziom NADH wzrastał z wiekiem, a poziomy NAD+, całkowitego NAD oraz potencjał redoks NAD+/NADH spadały.
To badanie jest nieustannie cytowane i słusznie. Jest również jednym z bardzo niewielu pomiarów stojących za twierdzeniem, które teraz jest wysuwane rutynowo. Dlatego warto zadać proste pytanie bezpośrednio: czy poziom NAD spada wraz z wiekiem w ludzkiej tkance, jak uzyskano każdą liczbę i na czym dokładnie polega ten spadek?
Co jest mierzone, gdy ktoś mówi NAD
NAD występuje w czterech wzajemnie przekształcalnych postaciach: NAD+, NADH, NADP+ i NADPH. Pierwsza para przenosi jon wodorkowy w metabolizmie katabolicznym; druga jest źródłem równoważników redukcyjnych dla biosyntezy i obrony antyoksydacyjnej. Oznaczenie, które podaje “NAD” bez określenia, o którą postać i który stopień utlenienia chodzi, niewiele mówi.
NAD+ pełni drugą funkcję, istotną w tym kontekście. Jest zużywany, a nie tylko krąży w cyklu, jako substrat poli(ADP-rybozo)polimeraz (PARP) w naprawie DNA, sirtuin oraz glikohydrolazy CD38. Zużycie rozszczepia cząsteczkę i uwalnia nikotynamid, z którego NAD+ musi zostać ponownie zsyntetyzowany. Tkanka utrzymuje więc ciągły cykl rozkładu i odzysku, a stężenie zmierzone w danej chwili jest wypadkową dwóch szybkości, a nie samą szybkością.
Sam pomiar również nie jest trywialny. Trammell i Brenner zauważyli, że wysokosprawna chromatografia cieczowa z detekcją UV nie zapewnia swoistości i czułości potrzebnych do rzetelnego oznaczania metabolitów NAD w złożonych próbkach, dlatego opracowali celowaną metodę wykorzystującą HPLC sprzężoną ze spektrometrią mas; tłumienie jonizacji określonych związków opisują jako problem we wcześniej opublikowanym podejściu, który ich metoda musiała skorygować.
Czy stężenie NAD spada wraz z wiekiem w tkankach ludzkich?
Trzy zestawy danych pochodzące od ludzi mają największe znaczenie i obejmują trzy różne kompartmenty.
| Badanie | Przedział | Metoda | Uczestnicy | Podany kierunek |
|---|---|---|---|---|
| Massudi i inni, PLoS ONE, 2012 | Skóra miednicy | Biochemiczne oznaczenia na próbkach tkanek | 49 dawców, od noworodków do osób w wieku 77 lat | NAD+ korelował ujemnie z wiekiem u mężczyzn (p = 0,001, r = -0,706) i u kobiet (p = 0,01, r = -0,537); aktywność PARP rosła z wiekiem u mężczyzn (p < 0,0001, r = 0,768) i korelowała odwrotnie z NAD+ w tkance (p = 0,0003, r = -0,639) |
| Zhu et al., PNAS, 2015 | Mózg, in vivo | Spektroskopia rezonansu magnetycznego fosforu-31 | Zdrowi ochotnicy | Zależny od wieku wzrost stężenia NADH; zależne od wieku spadki stężenia NAD+, całkowitego NAD oraz potencjału redoks NAD+/NADH |
| Clement et al., Rejuvenation Research, 2019 | Osocze krwi | Chromatografia cieczowa sprzężona z tandemową spektrometrią mas | Zdrowi uczestnicy w wieku 20-87 lat | Spadek stężenia NAD+, NADP+ i NAAD; wzrost stężenia NADH, NADPH, nikotynamidu, N-metylo-nikotynamidu oraz ADP-rybozy; brak istotnych zmian dla kwasu nikotynowego, NMN i NAMN |
Dwa szczegóły z tej tabeli zwykle gubią się w streszczeniach. Badanie skóry wykazało zależności głównie u mężczyzn; w tej samej kohorcie utlenianie lipidów i aktywność sirtuin korelowały z wiekiem u mężczyzn, a u kobiet nie. Z kolei badanie osocza w ogóle nie pokazuje jednolitego spadku – kilka metabolitów wzrosło, a trzy nie zmieniły się istotnie. Zdanie w rodzaju “NAD spada z wiekiem” upraszcza wzorzec, który obejmuje również wzrosty.
Zadeklarowane konflikty interesów są częścią lektury. Dwóch autorów badania skóry było dyrektorami start-upu biotechnologicznego działającego w obszarze NAD; pierwszy autor badania osocza był związany z firmą sprzedającą interwencje wydłużające życie. Żaden z tych faktów nie unieważnia pomiaru, a oba zostały ujawnione przez autorów. Są to powody, by oczekiwać niezależnej replikacji, a nie by odrzucać dane.
Dlaczego badania nad NAD nie zgadzają się ze sobą
Najpoważniejsze wyzwanie dla prostej narracji przyniosło śledzenie izotopowe, a nie lepsza metoda oznaczania stężeń. McReynolds i współpracownicy podawali we wlewie znakowane prekursory młodym i starym myszom i śledzili syntezę NAD w tkankach za pomocą spektrometrii mas. Cztery ustalenia jednocześnie podważyły standardową narrację.
- Deplecja NAD+ w tkankach u starych myszy była umiarkowana, z medianą spadku wynoszącą około 30% – nie załamanie sugerowane przez frazę „spadek NAD+”.
- Stężenie krążących prekursorów NAD+ nie uległo istotnym zmianom, a śledzenie wykazało niezaburzoną syntezę nikotynamidu z tryptofanu.
- W większości tkanek obrót mniejszej puli NAD+ u starych zwierząt był nieco szybszy, więc bezwzględny przepływ biosyntezy NAD+ został utrzymany. Produkcja nie zawodziła.
- Ograniczenie kaloryczne częściowo łagodziło zależny od wieku spadek przez zmniejszenie zużycia, natomiast ostry stres zapalny wywołany lipopolisacharydem obniżał NAD+ przez upośledzenie syntezy zarówno u młodych, jak i u starych zwierząt.
Ich wniosek jest taki, że spadek stężenia NAD wraz z normalnym starzeniem się jest stosunkowo subtelny i występuje pomimo utrzymanej produkcji, najprawdopodobniej dlatego, że enzymy zużywające są bardziej aktywne. Niższe stężenie przy niezmienionym przepływie to inne stwierdzenie fizjologiczne niż niewydolna ścieżka syntezy, i nie można ich odróżnić za pomocą pojedynczego pomiaru w jednym punkcie czasowym.
Towarzyszący przegląd tej samej grupy wprost przedstawia nierozwiązane problemy: wiele aspektów metabolizmu NAD+ pozostaje słabo poznanych, a dane od ludzi są ograniczone; zmiany składu komórek lub tkanek z wiekiem same mogą przesuwać zbiorczy odczyt NAD+; brakuje też narzędzi do określania zawartości NAD+ w konkretnych komórkach i przedziałach subkomórkowych oraz jakiejkolwiek wiedzy o progu, przy którym ubytek wywołuje skutki fizjologiczne w danej tkance. Bez znajomości progu nie da się orzec, czy różnica 30% jest istotna, czy błaha.
Dlaczego sposób postępowania z próbką i przedział decydują o liczbie
Pod każdą z tych wartości kryją się trzy ograniczenia strukturalne.
Przedział. Metabolity NAD w osoczu są pozakomórkowe. Badanie Clementa wyraźnie przedstawia swój wynik jako metabolom osoczowy NAD+, a jego autorzy opisują związane z wiekiem zmiany w tej zewnątrzkomórkowej puli. Traktowanie wartości osocza jako odczytu wewnątrzkomórkowego NAD w wątrobie lub neuronach jest wnioskiem, a nie pomiarem.
Uśrednianie. Ekstrakt całotkankowy uśrednia pule cytosolowe, mitochondrialne i jądrowe, które są regulowane oddzielnie, oraz uśrednia wartości dla każdego typu komórki obecnego w biopsji. Związana z wiekiem zmiana składu komórek w biopsji przesunie tę średnią bez zmiany pojedynczej komórki.
Chemia analityczna. NAD+ i NADH różnią się trwałością i są wrażliwe na warunki ekstrakcji, a formy zredukowane łatwo ulegają utracie. Dlatego celowane podejście oparte na spektrometrii mas zastąpiło detekcję UV i dlatego porównywanie bezwzględnych stężeń między badaniami, mierzonych w różnych laboratoriach z różnymi protokołami ekstrakcji, pozostaje zawodne.
CD38, apigenina i rola wzorców analitycznych
Jeśli to zużycie, a nie produkcja, napędza spadek, interesującymi celami stają się enzymy zużywające. Escande i współpracownicy, opisując CD38 – który ich grupa wcześniej zidentyfikowała jako główną NAD+azę u ssaków – scharakteryzowali dwa flawonoidy jako inhibitory CD38: kwercetynę i apigeninę. W ich eksperymentach farmakologiczne zahamowanie CD38 podnosiło poziom wewnątrzkomórkowego NAD+; traktowanie hodowli komórkowych apigeniną zmniejszało globalną acetylację białek oraz acetylację p53 i RelA-p65, a podanie apigeniny otyłym myszom zwiększało poziom NAD+, zmniejszało globalną acetylację białek i zmieniało kilka parametrów homeostazy glukozy i lipidów.
Praca ta dotyczy hodowli komórkowych i myszy. Wskazuje cel molekularny i narzędzie chemiczne, a nie efekt u ludzi, a autorzy przedstawiają ją jako wskazanie CD38 jako celu farmakologicznego, a nie jako gotową interwencję.
Chemia ma znaczenie dla każdego, kto powtarza takie eksperymenty. Apigenina to 5,7-dihydroksy-2-(4-hydroksyfenylo)-4H-chromen-4-on, PubChem CID 5280443, wzór sumaryczny C15H10O5, masa cząsteczkowa 270,24 g/mol, CAS 520-36-5. Należy do dużej rodziny blisko spokrewnionych flawonów, które różnią się pojedynczą grupą hydroksylową lub metoksylową i współwystępują w ekstraktach roślinnych, dlatego stałą inhibicji da się zinterpretować tylko wtedy, gdy badanym materiałem jest scharakteryzowany wzorzec analityczny z udokumentowaną tożsamością i czystością, a nie frakcja botaniczna o nominalnym składzie.
Często zadawane pytania
Jak mierzy się poziom NAD w tkance ludzkiej?
Na trzy sposoby, każdy dotyczący innego przedziału. Biochemiczne oznaczenia w materiale biopsyjnym dają zawartość w całej tkance, jak w badaniu ludzkiej skóry z 2012 roku. Celowana chromatografia cieczowa sprzężona z tandemową spektrometrią mas rozdziela poszczególne metabolity w osoczu lub ekstraktach tkankowych. Spektroskopia rezonansu magnetycznego fosforu-31 mierzy NAD+ i NADH nieinwazyjnie w nienaruszonych narządach, jak dotąd głównie w mózgu.
Czy można mierzyć stężenie NAD w żywym ludzkim mózgu?
Tak. W badaniu z 2015 roku opublikowanym w Proceedings of the National Academy of Sciences wykorzystano wysokopolową spektroskopię rezonansu magnetycznego fosforu-31 do ilościowego określenia wewnątrzkomórkowej zawartości NAD+ i NADH oraz stanu redoks NAD+/NADH w nienaruszonym ludzkim mózgu. U zdrowych ochotników odnotowano zależny od wieku wzrost poziomu NADH przy jednoczesnym spadku NAD+, całkowitego NAD i potencjału redoks.
Jaka jest różnica między stężeniem NAD a przepływem NAD?
Stężenie to wielkość puli w danej chwili; przepływ to szybkość, z jaką pula jest syntetyzowana i zużywana. Pula może się kurczyć przy niezmienionym przepływie, jeśli zarówno synteza, jak i zużycie wzrastają. Śledzenie izotopowe u starych myszy wykazało stężenie NAD+ w tkankach niższe o około 30% przy zachowanym bezwzględnym przepływie biosyntezy – różnicę niewidoczną dla oznaczeń stężenia.
O ile spada poziom NAD wraz z wiekiem u myszy?
W badaniu izotopowym przeprowadzonym na wielu tkankach starych myszy mediana spadku poziomu NAD+ wyniosła około 30%. Autorzy opisują ten spadek jako stosunkowo subtelny, zauważają, że krążące prekursory nie uległy znaczącym zmianom, i przypisują niższe stężenie raczej większej aktywności enzymów zużywających NAD+ niż upośledzonej syntezie.
Dlaczego badania nad NAD dają rozbieżne wyniki?
Ponieważ mierzą one różne przedziały różnymi instrumentami. Osocze, biopsja skóry i spektroskopia mózgu in vivo nie są wymiennymi odczytami, protokoły ekstrakcji różnią się między laboratoriami, a wartości dla całej tkanki uśredniają pule subkomórkowe i typy komórek. W tej dziedzinie brakuje też określonego progu, poniżej którego niedobór ma konsekwencje fizjologiczne, więc ta sama liczba uzasadnia przeciwstawne interpretacje.
Czy poziom NAD w osoczu jest dobrym markerem poziomu NAD w tkankach?
Nie zostało to ustalone. Metabolom NAD w osoczu jest pulą pozakomórkową, a badanie, które scharakteryzowało go w różnych grupach wiekowych, wykazało, że niektóre metabolity spadały, inne rosły, a kilka pozostawało bez zmian. Wnioskowanie o wewnątrzkomórkowym stanie NAD w wątrobie, mięśniach lub mózgu na podstawie wartości w osoczu jest założeniem i żadna opublikowana kalibracja go nie potwierdza.
Co ma wspólnego CD38 ze spadkiem poziomu NAD?
CD38 to zużywająca NAD+ glikohydrolaza, opisana przez Chiniego i współpracowników jako główna NAD+aza u ssaków. Ponieważ śledzenie izotopowe wskazuje, że przyczyną związanego z wiekiem spadku jest zwiększone zużycie, a nie upośledzona synteza, w centrum zainteresowania mechanistycznego znalazły się enzymy zużywające, takie jak CD38 i PARP. W tym kontekście apigeninę i kwercetynę scharakteryzowano jako inhibitory CD38.
Bibliografia
- Massudi H et al. Age-associated changes in oxidative stress and NAD+ metabolism in human tissue. PLoS ONE, 2012;7(7):e42357
- Zhu XH, Lu M, Lee BY, Ugurbil K, Chen W. In vivo NAD assay reveals the intracellular NAD contents and redox state in healthy human brain and their age dependences. PNAS, 2015;112(9):2876-2881
- Clement J, Wong M, Poljak A, Sachdev P, Braidy N. The plasma NAD+ metabolome is dysregulated in “normal” aging. Rejuvenation Research, 2019;22(2):121-130
- McReynolds MR et al. NAD+ flux is maintained in aged mice despite lower tissue concentrations. Cell Systems, 2021;12(12):1160-1172
- McReynolds MR, Chellappa K, Baur JA. Age-related NAD+ decline. Experimental Gerontology, 2020;134:110888
- Trammell SA, Brenner C. Targeted, LCMS-based metabolomics for quantitative measurement of NAD+ metabolites. Computational and Structural Biotechnology Journal, 2013;4:e201301012
- Escande C et al. Flavonoid apigenin is an inhibitor of the NAD+ ase CD38. Diabetes, 2013;62(4):1084-1093
- PubChem CID 5280443, apigenina – identyfikatory i obliczone właściwości
Tylko do celów badawczych. Nonsensia dostarcza wzorce analityczne do zastosowań laboratoryjnych i badawczych. Niniejszy artykuł jest publikowany w celach naukowych i edukacyjnych. Nie stanowi on porady medycznej, nie opisuje żadnego zastosowania u ludzi, a nic w nim zawartego nie powinno być odczytywane jako zalecenie podania jakiejkolwiek substancji osobie lub zwierzęciu.
Kategorie: Nauka o długowieczności
Ten artykuł jest częścią naszego przewodnika: Biologia starzenia: cechy charakterystyczne, chemia i co potwierdzają dowody.
Omawiana w tym artykule substancja jest dostępna jako wzorzec analityczny: Apigenina ≥99% – wzorzec analityczny, 1000 mg | CAS 520-36-5.